Lehre

Versuch 1: Verdünnung/Puffersystem/Titration

In Versuch 1 wird praktisch gezeigt, wie pH-Werte von Basen und Säuren gemessen werden können. Es werden auch Verdünnungen durchgeführt, Puffer hergestellt und Titrationen durchgeführt, um Puffereigenschaften zu erkennen, einschließlich der Vergleich von Puffereigenschaften verschiedener Pufferkonzentrationen mit Wasser.

Versuch 2: spektroskopische Analyse von 4 Hämoglobin-Derivaten

Versuch 2 des Biochemie-Praktikums führt die Analyse und Isolierung von Hämoglobin aus menschlichem Blut ein, einschließlich der chemischen Umwandlung in verschiedene Hämoglobin-Komplexe. Dabei wird auch der Umgang mit einem Spektrophotometer gelehrt, um ein Verständnis für die Funktionsweise biomedizinischer Analysegeräte zu vermitteln.

Versuch 3: Proteinanalyse nach Lowry

Im Versuch 3 wird die Proteinmenge mittels Lowry-Methode bestimmt, unter Verwendung bekannter Konzentrationen einer Proteinprobe, um eine unbekannte Konzentration durch Spektrophotometrie und das Lambert-Beersche Gesetz zu ermitteln.

Der Krebsbiologiekurs findet im Sommersemester in Form eines Blockpraktikums statt und besteht aus einem 3 Experimente umfassenden Praktikum;

1. Zell-Trainer und Cellular Force Analyzer (Zellkraftmessgerät)

Die Grundlagen der zellulären Mechanobiologie werden zusammen mit der Einführung eines Zelltrainers vorgestellt. Es werden verschiedene Anwendungsbereiche erläutert und Experimente mit flexiblen Kultursubstraten durchgeführt. Die Auswirkungen des Zelltrainings auf das Zellzytoskelett werden visualisiert und diskutiert. Ein innovatives Gerät zur Messung relativer zellulärer Kräfte wird vorgestellt. Das Messprinzip des Geräts wird erklärt und verschiedene Versuchsaufbauten werden getestet, um die Funktionalität und Genauigkeit des Geräts zu demonstrieren. Es werden Anwendungsbereiche in der Medizin diskutiert.

2. Zytoskelettfärbung und Fluoreszenzmikroskopie

Die Theorie des Zellzytoskeletts, die Grundlagen der zellulären Bildgebung und die Zellfärbungsverfahren werden vorgestellt. Es wird ein Experim ent mit vorkultivierten Zellmonolayern mit Hilfe eines Fluoreszenzmikroskops und des Farbstoffs Alexa-Fluor zur Zellfärbung durchgeführt. Der Zellmorphologie-Index (CMI) wird vorgestellt und sein Messprinzip wird diskutiert und erklärt.

3. Flusskammermessungen mit Blutzellen & Krebsmetastase unter Mikroskop

Unter Verwendung des ELIAS-Systems, welches in diesem Labor entwickelt wurde, wird die Adhäsion von Erythrozyten (RBC) auf einem Endothelmonolayer untersucht und diskutiert. Die Auswirkungen verschiedener Umgebungsparameter sowie einiger ausgewählter chemischer Substanzen werden untersucht und dargestellt. Außerdem werden mikroskopische Präparate von von Krebs betroffenen Zellen gezeigt.